Техника забора крови и приготовления мазков для исследования на малярию.

Взятие крови и приготовление тонкого мазка при малярии

Техника забора крови и приготовления мазков для исследования на малярию.

ОБРАБОТКА НА ПЕДИКУЛЁЗ

ЦЕЛЬ: выявление вшей, гнид и их ликвидация.

ОСНАЩЕНИЕ:

1. Укладка по Ф. № 20.

2. Мыло.

3. Полотенце.

4. Фартук.

5. Халат.

6. Перчатки.

7. Косынка.

8. Журнал регистрации выявленных случаев педикулёза.

9. Ёмкости с дезинфицирующими растворами.

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА И МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:

1. Сообщить пациенту цель и ход процедуры.

2. Надеть халат, перчатки, косынку (убрать все волосы), фартук.

3. Пригласить пациента.

ПОМНИ! Обработка пациента производится или в боксе приёмного покоя (при поступлении), или в специальной комнате (если пациент находится в отделении). 

ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:

1. На пол около ванны (раковины) постелить клеёнку.

2. На клеёнку поставить стул с моющимся сидением.

3. Усадить пациента.

4. Покрыть плечи пелериной, заправив её за одежду.

5. По возможности обрезать волосы ножницами (с согласия пациента). При необходимости у мужчин сбрить бороду, усы, брови (одноразовым инструментарием).

6. Обильно смочить волосы пациента раствором «Нитифор» («Педилин»), укутав волосы пациента косынкой. Экспозиция: 30 – 40 минут.

7. По истечении экспозиции: снять косынку и вымыть голову с мылом.

8. Осушить волосы полотенцем.

9. Взять расчёску с мелкими зубцами, проложить зубцы ватой, смоченной в 4% уксусной кислоте (уксус помогает отклеиванию гнид).

10. Поэтапно расчёсывать волосы по прядям, по мере загрязнения вату на расчёске менять.

11. Высушить волосы и повторно осмотреть.

12. Снять пелерину и поблагодарить пациента.

ЗАВЕРШЕНИЕ:

1. Полотенце, косынку замочить в растворе: хлорамина: 3% – 30 минут (1% – 60 минут; анолита 0,03% – 60 минут). Затем ополоснуть и выстирать.

2. Стул обработать двукратным протиранием: 3% раствором хлорамина, 0,05% раствором анолита. С интервалом – 15 минут.

3. Остатки волос, вату с клеёнки ссыпать в ведро с маркировкой «Для сжигания волос», вынести из отделения и сжечь.

4. Клеёнку и пелерину (если клеёнчатая) погрузить в раствор: хлорамина: 3% – на 60 минут (1% – на 120 минут; 0,03% анолита – на 60 минут; 0,4% септодор – форте – на 60 минут). Затем ополоснуть и высушить.

5. Ножницы, машинку для стрижки волос, расчёску обработать обжиганием над пламенем спиртовки.

6. Одноразовый бритвенный станок погрузить в 5% раствор хлорамина на 60 минут, затем упаковать в полиэтиленовый пакет и утилизировать.

7. Медицинский персонал: снять косынку, фартук и замочить в 3% растворе хлорамина, затем ополоснуть и высушить.

8. Снять перчатки, погрузить в 5% раствор хлорамина на 60 минут, затем утилизировать.

9. Вымыть полы с: 3% хлорамином, 0, 03% анолитом, 0,4% септодором с добавлением хлорофоса

10. Заполнить журнал регистрации выявленных случаев педикулёза.

11. Произвести маркировку истории болезни – «П» красной пастой.

ТЕХНИКА ВЗЯТИЯ МАЗКОВ ИЗ НОСОГЛОТКИ НА МЕНИНГОКОКК

ЦЕЛЬ: собрать материал для бактериологического исследования, провести лабораторную диагностику менингококковой инфекции.

ОСНАЩЕНИЕ:

1. Стерильная пробирка с петлей и ватными тампонами в штативе,

2. Чашка Петри с сывороточным агаром,

3. Маска и стерильные перчатки,

4. Стерильный шпатель,

5. Бланк направления,

6. Стеклограф.

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА:

1. Объяснить пациенту или родственникам цель и ход процедуры,* получить согласие на проведение процедуры;

2. Сообщить время и место проведения процедуры

ПОДГОТОВКА МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:

1. Выписать направление в лабораторию;

2. Подписать стеклографом пробирку и чашку Петри (со стороны среды);

3. Вымыть и осушить руки;

4. Надеть перчатки и маску;

ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:

1. Усадите пациента рядом с источником света и попросите запрокинуть голову несколько назад.

2. Извлеките петлю с ватным тампоном из пробирки на 2/3, взяв её правой рукой за пробку, в которую он вмонтирован,

3. При этом согните её о внутренний край пробирки под углом 1350 и извлеките полностью.

4. Попросите пациента открыть рот или откройте его сами, для этого заведите шпатель левой рукой за коренные зубы и слегка надавите на него.

5. Зафиксируйте шпателем корень языка, правой рукой петлю со стерильным тампоном введите в полость рта по шпателю изогнутым концом вверх.

6. Осторожно, не касаясь тампоном слизистой оболочки рта и языка, проведите тампон в носоглотку за язычок.

7. Двумя – тремя легкими движениями соберите слизь с задней стенки глотки.

8. Осторожно извлеките петлю с тампоном (не касаясь языка, зубов и неба) и поместите её в пробирку.**

9. Поблагодарите пациента.

ЗАВЕРШЕНИЕ:

1. Вымыть и обработать антисептическим раствором руки в перчатках;

2. Снять маску, перчатки и поместить их в 5% раствор хлорамина на 1 час, затем утилизировать;

3. Вымыть и осушить руки;

4. Отправить собранный материал в бактериологическую лабораторию.

Примечания:*Забор материала производится натощак, до орошения или полоскания рта;

**При посеве на чашку Петри: взять чашку в ладонь, большим, указательным и средним пальцами приоткрыть крышку и посеять материал втирающими движениями.

Взятие крови и приготовление тонкого мазка при малярии.

ЦЕЛЬ: обнаружение малярийного плазмодиума в крови

ОСНАЩЕНИЕ:

1. 70% раствор спирта этилового и эфира медицинского.

2. Предметные стёкла, обезжиренные смесью Никифорова.

3. Бланки направлений, авторучка, простой карандаш

4. Спички.

5. Круглая резинка.

6. Конверт из крафт-бумаги.

7. Лоток для сброса.

8. Ёмкости с дезинфицирующим раствором.

9. Стерильные: лоток, индивидуальные перья-копья, пинцет, ватные шарики.

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА И МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:

1. Установить доверительные отношения с пациентом.

2. Объяснить цель и ход процедуры, получить его согласие.

ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:

1. Вымыть и осушить руки.

2. Надеть перчатки и маску.

3. Обработать кожу IV пальца руки спиртом.

4. Вскрыть перо – копье, проверив срок годности.

5. Проколоть мякоть латеральной фаланги IV пальца индивидуальным пером-копьём.

6. Поместить перо в лоток для сброса.

7. Снять первую каплю крови сухим ватным шариком.

8. Повернуть палец проколом вверх.

9. Прикоснуться предметным стеклом ко второй капле крови, отступив от узкого края стекла на 1,5-2 см.

10. Приложить ватный шарик к месту прокола.

11. Поставить шлифованное стекло перед каплей крови под углом 450.

12. Продвинуть шлифованное стекло до соприкосновения с каплей крови правой рукой.

13. Сделать мазок быстрым движением, когда кровь равномерно распределится между обоими стёклами.

14. Указать фамилию пациента карандашом на мазке или регистрационный номер с обратной стороны стекла.

15. Высушить препарат на воздухе в горизонтальном положении.

16. Поместить стекло с мазоком между двумя стёклами с помощью спичек и круглой резинки.

17. Поместить препарат в конверт.

ЗАВЕРШЕНИЕ:

1. Оформить направление в паразитологическую лабораторию.

2. Отправить конверт в лабораторию сразу же.

3. Провести дезинфекцию использованного инструментария и оснащения:

· Перо- копьё замочить в 5% растворе хлорамина на 60 минут в, затем утилизировать.

· Тампон и марлевую салфетку замочить в 5% растворе хлорамина на 60 минут, а затем утилизировать.

· Лоток обработать двукратным протиранием 3% хлорамином с интервалом 15 минут или погрузить в раствор на час.

· Снять перчатки, опустить в 5% раствор хлорамина на 1 час, затем утилизировать.

4. Снять маску.

5. Вымыть и осушить руки.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Источник: https://studopedia.ru/20_61604_vzyatie-krovi-i-prigotovlenie-tonkogo-mazka-pri-malyarii.html

Выписка из Методических указаний по забору и исследованию крови на малярию

Техника забора крови и приготовления мазков для исследования на малярию.

                                                                                 ПРИЛОЖЕНИЕ№2

              Выписка из Методических указаний по забору и исследованию  крови  на малярию

               Приказа №3\4 от 06.01.98г.»Об усилениимероприятий по профилактике завоза

                 Малярии в С.Петербурге».

           Подтвердитьдиагноз малярии  можно  только исследовав кровь под микроско-

пом .Кровь для исследования  берут при первом же   подрзрении  на маляриювне

зависимости от наличия  илиотсутствия  лихорадки в этот момент.

         Кровь на маляриюисследуют  методом  толстой  капли  и тонкого мазка.

основной метод исследования–изучение толстой  капли.

         Процедура  исследования   крови с целью обнаружения  малярийных

паразитов включает три этапа:

   1.приготовление препаратовкрови.

   2. их окраска

   3.микроскопия

Толстая капля и тонкий мазок   должны  быть   приготовлены на обезжиренных предметных  стеклах  снеповрежденной  поверхностью.

                    Подготовка предметных стекол

Предметные стекла ,не бывшиев употреблении, подвергают  предстерилизационной обработке согласно ОСТ42-21-2-85 от 10.07.85.г. после чего  помещают  в  сосуд  с

водопроводной  водой ,которую  меняют  6-7  раз, затем прополасктвают  дистилли-

рованной   водой ,вытирают  чистой хлопчатобумажной  тканью  и помещают   в  смесь

 Никифорова ( дляприготовления смеси Никифорова  берут равные  количества  этилового

спирта-ректификата эфира  израсчета 1мл.спирта на одно стекло)  Через сутки  обезжиренные стекла извлечь изспирто-эфирной   смеси,высушить  хлопчатобумажной тканью, завернуть в чистуюбумагу  не более 10 штук в упаковке  и подвергнуть  стерилиззации  в сухожа-

ровом шкафу  при   180 –1час. Стекла, бывшие в употреблении,требуют более тщательной обработки.  Еслина стеклах имеется иммерсионное   масло, его следует   удалить

бензолом  или  другимрастворителем жира (ксилол, толуол), вату и ветошь, применяемые

для снятия  иммерсионногомасла, подвергают   обеззараживанию с последующей  утилизацией. Стекла замачивают  в 3% растворе  хлорамина на 60 минут или любом другом

дезинфектанте. Дальнейшая предстерилизационная  обработка  и стерилизация сходны 

с обработкой  истерилизацией   стекол,  не бывших  в употреблении.

     Во время всехманипуляций  с предметными  стеклами  их  нужно брать так, чтобы

Не касаться пальцамиповерхности стекла.

       При работе спрепаратами крови   медработник  должен соблюдать  правила  по про-

филактике профессионального заражения:

· работать в резиновых перчатках;

· не допускать приема пищи   икурения  в помещенях для проведения забора  корви

· иметь в наличии антисептики

· поверхности рабочих столов ииспользованные емкости в конце рабочего дня или в случае загрязнения кровьюобеззараживать 3% раствором хлорамина.

                                   Приготовление препарата крови.

           Приготовлениепрепаратов крови складывается из следующих зтапов:

· очистка кожи;

· прокол кожи;

· распределение крови по стеклу;

· высушивание препарата;

· маркировка препарата

                                        Очистка кожи

Обычно кровь берут из третьего или четвертого  пальца левойруки  (можно брать из мочки уха, а  у   грудных

детей – из большого пальца ноги или пятки ). Очень важно ,чтобы кожа в месте прокола  была чистоой ,  так

как попавшие в препарат   микроорганизмы  могут привести   кдиагностическим ошибкам .Грязные руки  моют мылом.  Кожу в месте  укола тщательно   протирают  70%  этиловым спиртом. Первую каплю крови ,

выделившуюся  после  прокола , удаляют  стерильной ватой .При этом  удаляют   остатки алкоголя , которые

могут  способствовать фиксации  крови   в препарате.

     Необходимо пользоваться  иглами –копьями  разовогопользования.

Стерильные иглы-копья  берутся стерильным пинцетом.  Впроцессе  работы   не должна  допускаться

расстерилизация  пинцета, нельзя выкладвать пинцет  нанестерильную поверхность стола. Для этого

используют стерильную прбирку или стерилизатор,  в которыхпинцет  стерилизовался.  Вата  должна стерилизоваться  в виде  отдельных шариков , помещенных в пакет из крафтбумаги. Должна  быть  поставлена датастерилизации. Нельзя допускать  расстерилизацию ваты путем перекладывания изпакета в нестерильную емкость.

При заборе крови  укладка  должна  быть условно разделена начистую половину,  где установлены  емкости

со стерильными  материалами,  инструментами,  и грязнуюполовину  (отработанные копья,стекла с мазками,

вата ).

На стерильном  материале  и инструментарии должна  быть  указана  дата стерилизации, наименование

инструментария и количество

                             Приготовление тонкого мазка

На предметное стекло  с правой  стороны, отступив от края  на1-1,5 см наносят  маленькую капельку

крови.Стекло кладут на горизонтальную поверхность  ификсируют  его  левой рукой. В правую  руку

берут  шлифованное стекло , опускают  его в каплю крови  таким образом , чтобы  кровь распределилась

 ровной полоской  между краем шлифованного стекла  иповерхностью предметного. Затем  легким

равномерным движением   вдоль стекла  распределяют   кровь по предметному  стеклу.  Правильно

сделанный  мазок  должен  быть  равномерно  тонким  сбахромкой  на конце , через него можно

прочитать  печатный текст.

 При приготовлении  мазка  большое  значение   имеет   уголнаклона  шлифованного стекла.

Нормальной толщины мазок получается  при  наклоне стекла под углом 30-35. Если угол наклона

больше 45, мазок будет коротким и толстым. Если шлифованное  стекло наклонить до 20-25, то получится

очень длинный мазок  до самого края предметного  стекла. Исследованиетаких мазков затруднено.

Тонкий мазок  высыхает очень   быстро. После высыхания егомаркируют, с этой целью  лучше  использовать

простой карандаш.

                        ПРИГОТОВЛЕНИЕ  ТОЛСТОЙ КАПЛИ

 Исследуемая толстая капля должна  быть  определеннойвеличины.Она должна быть не слишком толстой,

но и не слишком  тонкой. Диаметр  толстой капли должен бытьоколо 20мм. Рекомендуется делать две

капли на одном стекле  на случай , если  одна из нихокажется  испорченной . Существует несколько

способов   приготовления  толстой  капли .

1.  Квыступившей  из прокола  капле  крови диаметром 3-4мм прикасаются  предметным стеклом,

избегая касания поверхности кожи,и распределяют  кровь по стеклу в кружок  одним движением.

2.    На предметном  стекле сначала готовят  мазок  немноготолще обычного, затем, пока он еще   не высох,

        на него наносят   две капли крови, которые   по влажномумазку  растекаются  правильными  дисками.

        Второй способ  является  наилучшим  для приготовления толстой капли. Необходимо соблюдать

        правила  высушивания  толстых  капель: высыхать они должны  постепенно, их нужно держать

         вдали от нагревательных приборов  или прямыхсолнечных лучей .

Недопустимо  делать   надписи   на поверхности  толстой капли. Для маркировки нужно провести дополнительную полоску кровью , расположив  ее  между толстыми   каплями  или ближе к концу

стекла .Капли, приготовленные  на мазке,  маркируют,используя свободную  поверхность  мазка.

маркировку делают  простым  карандашом  после высушивания  препарата . Неокрашенные толстые

капли не подлежат  длительному  хранению.

На препаратах крови указывать фамилию обследуемого, как было указано выше (между толстыми

каплями  на штрихе крови и на тонком  мазке  простым карандашом).

                        Направление для исследованиякрови  на малярию

Источник: https://vunivere.ru/work9353

Алгоритм приготовления мазка крови для диагностики малярии и прочих паразитозов

Техника забора крови и приготовления мазков для исследования на малярию.

Кровь для паразитологических исследований берут капиллярную из пальца руки (у взрослых – безымянного, у детей – большого). Для прокола кожи используется стерильный одноразовый скарификатор.

1) Перед проколом кожу протирают ватным тампоном, смоченным 70°-ным спиртом. Первую каплю крови вытирают сухим тампоном. Последующие капли непосредственно из пальца или с помощью гематологического капилляра переносят на стерильное предметное стекло (диаметр около 5 мм).

2) Кровь распределяют в равномерный диск или прямоугольник размером 1-1,5 см. толщина «толстой капли» должна быть такой, чтобы через нее просматривался печатный текст.

3) Мазок высушивается, укладывается в одноразовую чашку Петри.

4) Упаковывается в соответствие с алгоритмом.

4. Алгоритм забора материала из везикул:

Забор материала из везикул проводится двумя способами:

1) Аспират из везикул: Очаг обрабатывают стерильным физиологическим раствором. Аспирируют жидкость из везикул иглой № 26-27, присоединенной к туберкулиновому шприцу. Переносят материал в одноразовую транспортную пробирку и набирают этим же шприцем 1-2 мл транспортной среды, промывая шприц. Сливают в ту же пробирку, закрывают и упаковывают.

2) Мазок на зонде-тампоне: Обрабатывают везикулу стерильным физиологическим раствором. Разрушают везикулу стерильной иглой, собирают жидкость зондом-тампоном, стараясь собрать клетки основания везикулы. Помещают зонд-тампон в стерильную одноразовую микропробирку для ПЦР (эпиндорф) с транспортной средой. Закрывают и упаковывают.

3) Упаковывается в соответствие с алгоритмом.

5. Алгоритм забора материала из бубона:

1) Кожу на участке, намеченном для прокола, обрабатывают 70°-ным спиртом, а затем смазывают 5%-ным раствором йода и вновь протирают 70°-ным спиртом.

2) Иглу шприца емкостью 5 мл вводят с таким расчетом, чтобы ее острие достигло центральной части бубона, после чего, оттянув до отказа поршень, медленно вытягивают иглу. В случае невозможности получить материал, в бубон вводят 0,3 – 0,5 мл стерильного изотонического раствора натрия хлорида или питательного бульона.

3) После извлечения иглы из бубона через нее набирают в шприц 0,5 мл стерильного питательного бульона (рН 7,2) из пробирки с 5 мл питательного бульона.

4) Содержимое выливают в одноразовую микробиологическую пробирку и плотно завинчивают крышку, заклеивают лейкопластырем.

5) Последние капли из шприца наносят на предметное стекло, помещенное в одноразовую чашку Петри. Чашку закрывают. После того, как мазок подсохнет, пинцетом его помещают в смесь Никифорова на 30 мин. Затем фиксированный мазок пинцетом переносят в одноразовую чашку Петри, которую заклеивают лейкопластырем.

6) Упаковывается в соответствие с алгоритмом.

6. Алгоритм забора материала из носоглотки:

Забор проводят двумя тампонами свабами.

1) Тампоны свабы вводят легким движением по нижнему носовому ходу, прижимая крылья носа к тампону и носовой перегородке для более плотного контакта со слизистой оболочкой, на глубину 2-3 см до нижней раковины.

2) Рабочую часть одного зонда ватным тампоном помещают в стерильную микропробирку с транспортной средой. Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращают зонд не более 10 – 15 секунд, избегая разбрызгивания раствора. Вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки и, отжав избыток жидкости, удаляют зонд и закрывают пробирку.

3) Упаковывается в соответствие с алгоритмом.

7. Алгоритм забора материала из зева (глотки):

Забор проводят тампоном свабом натощак или через 3-4 часа после приема пищи. Перед взятием пробы проводится полоскание полости рта кипяченой водой.

1) Мазок берут сухим стерильным ватным тампоном вращательными движениями с поверхности миндалин, небных дужек и задней стенки ротоглотки, прижимая язык одноразовым полимерным стерильным шпателем.

Забор проводится поочередно: правая миндалина, правая небная дуга, левая миндалина, левая небная дуга, язычок, задняя стенка глотки.

При взятии пробы не касаются тампоном слизистых щек, языка, губ, а также не собирают слюну.

2) После использования, шпатель сбрасывают в емкость с дезинфекционным раствором.

3) После взятия материала тампон (рабочую часть зонда с ватным тампоном) помещают в стерильную одноразовую микропробирку с транспортной средой (500 мкл стерильного 0,9% раствора натрия). При необходимости зонд обламывают. При отсутствии транспортной среды допускается забор материала в стерильную одноразовую микропробирку.

4) Упаковывается в соответствие с алгоритмом.

8. Алгоритм забора мокроты:

1) Перед сбором мокроты провести туалет ротовой полости.

2) Мокроту забирают в одноразовые контейнеры с завинчивающимися крышками.

3) Упаковывается в соответствие с алгоритмом.

Одновременно с пробой мокроты в лабораторию отправляются смывы из зева.

9. Алгоритм забора мочи:

Не допускается собирать мочу с постельного белья, из мочеприемника. Перед сбором промыть наружные половые органы кипяченой водой. Не допускается использование дезинфектантов.

1) Мочу в объеме 100 мл забирают в одноразовые контейнеры с завинчивающимися крышками. При необходимости забор осуществить с помощью стерильного одноразового катетера, который вводят в мочевыводящие пути.

2) Упаковывается в соответствие с алгоритмом.

10. Алгоритм забора рвотных масс:

Рвотные массы для лабораторного исследования необходимо брать немедленно при выявлении больного и обязательно до начала лечения антибиотиками.

1) Рвотные массы в количестве 20,0 мл забирают с помощью ложки, вмонтированной в крышку контейнера, либо стеклянной трубки с грушей, не перенося материал на расстояние, в одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой.

2) Протирают руки, затем контейнер салфеткой, смоченной дезинфекционным раствором.

3) Контейнер упаковывают в соответствие с алгоритмом.

11. Алгоритм забора фекалий:

Испражнения для лабораторного исследования необходимо брать немедленно при выявлении больного и обязательно до начала лечения антибиотиками.

1) Испражнения в количестве 20,0 мл забирают с помощью ложки, вмонтированной в крышку контейнера, либо стеклянной трубки с грушей, не перенося материал на расстояние, в одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой.

2) Протирают руки, затем контейнер салфеткой, смоченной дезинфекционным раствором.

3) Контейнер упаковывают в соответствие с алгоритмом.

При отсутствии испражнений материал забирают ректальными полимерными петлями.

1) Петлю смачивают стерильным физиологическим раствором и вводят в прямую кишку на глубину 5 -6 см.

2) Содержимое переносят в флакон с 1%-ной пептонной водой, погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращают петлю не более 10 – 15 секунд, избегая разбрызгивания раствора

3) Петлю сбрасывают в емкость с дезинфекционным раствором.

4) Контейнер упаковывают в соответствие с алгоритмом.

12. Алгоритм забора материала от трупа:

1) Забор материала от трупа для лабораторного исследования производят стерильными инструментами.

2) Вырезанный для исследования кусочек органа, помещают в одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой, после чего инструменты каждый раз вытирают увлажненным тампоном, смачивают в спирте и обжигают над пламенем горелки.

При подозрении на чуму.

Берут кусочки печени, селезенки, легких, лимфатических узлов, костного мозга из трубчатой кости и грудины, а также кровь, или сгустки ее из полости сердца и крупных сосудов.

Кровь берут из полости сердца шприцем с длинной иглой достаточно широкого диаметра и переносят в стерильную пробирку с резиновой пробкой. Прокол сердечной мышцы производят через участок ее, простерилизованный прикосновением раскаленного металлического шпателя. Если полость желудочка пуста, можно взять кровь из предсердия, крупного сосуда.

При подозрении нахолеру.

Берут отрезки (длиной около 10 см) верхней, средней и нижней частей тонкой кишки, разрез производят между двойными лигатурами, предварительно наложенными на оба конца изымаемого участка кишечника. Желчный пузырь после перевязки протока извлекают целиком.

Содержимое кишечника и желчь от трупа можно взять стерильным шприцем с толстой иглой в объеме до 10 мл и перенести в емкость с 1%-й пептонной водой.

При подозрении на SARS.

Берут ткани легких, сегментарные бронхи, кровь, образцы фекалий

Взятые образцы органов трупов укладывают отдельно в полимерные контейнеры для сбора и транспортировки, плотно завинчивают крышки, протирают салфеткой, смоченной дезинфекционным раствором. Заклеивают лейкопластырем. Подписывают маркером.

13. Алгоритм упаковки материала:

Все материалы, доставляемые в лабораторию, должны быть герметично упакованы в соответствии с СП 1.2.036-95 «Порядок учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов I-IV групп патогенности» в следующем порядке:

1) транспортная емкость с отобранными образцами (плотно закрывающиеся пластмассовые пробирки или флаконы с завинчивающимися крышками); плотно закрывается, верхний конец транспортной емкости вместе с крышкой герметизируется, с использованием пластыря или пластилина.

2) в плотный полиэтиленовый пакет подходящего размера с ватой (или другим гигроскопичным материалом) в количестве достаточном для адсорбции всего образца в случае его утечки, помещают транспортную емкость; полиэтиленовый пакет следует герметично заклеить или запаять.

3) в отдельный полиэтиленовый пакет вкладывают бланк направления с указанием: наименование направляющего учреждения, ФИО больного, возраст, место жительства, предварительный диагноз, эпидемиологический анамнез, вид материала, дата и время взятия материала, данные об использовании антибиотиков, о вакцинации (в зависимости от нозологической формы).

4) пакеты с образцами от одного пациента вместе с направлением упаковывают во второй плотный полиэтиленовый пакет. Не допускается упаковывание образцов материалов от разных людей в один и тот же пакет.

5) герметично закрытые полиэтиленовые пакеты помещают в термоизолирующий плотно закрывающийся контейнер (термос), приспособленный для транспортирования биологических материалов.

В термоконтейнеры и термосы помещают охлаждающие элементы или пакеты со льдом.

Доставка материала производится медицинским работником в контейнере при температуре от 2 до 8°С в течение суток в ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Челябинской области» ул.Свободы, 147.

Направление материала от больного с подозрением на особо опасную инфекцию и вирус гриппа А (H1N1)

(форма прилагается к каждому образцу материала, направляемого для исследования)

  1. ЛПУ, направляющее материал_____________________________________
  2. ФИО больного__________________________________________________
  3. Гражданство____________________________________________________
  4. Дата рождения__________________________________________________
  5. Область Челябинская, район_______________________________________

город_____________________улица________________________________

дом_______________квартира_____________________________________

  1. Дата заболевания________________________________________________
  2. Дата, время и место обращения за медицинской помощью_____________

_______________________________________________________________

  1. Предварительный диагноз_________________________________________

_______________________________________________________________

  1. Кем поставлен (ФИО врача, должность), название учреждения__________

_______________________________________________________________

  1. Сведения о приеме антибиотиков, противовирусных препаратов

(наименование, доза, длительность приема)__________________________

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________

  1. Наличие вакцинации против подозреваемой инфекции________________

_______________________________________________________________

  1. Дата и время взятия материала для исследования_______/________/_____
  2. Вид материала___________________________________________________
  3. Пробы отбирали (ФИО, должность, подпись)_________________________

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________

  1. *Пробы доставил (ФИО, должность, подпись)________________________

_______________________________________________________________

  1. *Время доставки проб (дата, время)_________________________________
  2. *Примечание____________________________________________________

(состояние доставленного материала)

  1. *Подпись врача лаборатории______________________________________

*Пункты 15-18 заполняются сотрудниками лаборатории

Источник: https://cyberpedia.su/6x71d7.html

Стандарт Взятие крови и приготовление тонкого мазка при малярии

Техника забора крови и приготовления мазков для исследования на малярию.

Цель:диагностическая.

Ресурсы:70% спирт, предметные стекла, обезжиренные смесью Никифорова, бланки направлений, ручку, стеклограф, спички, круглую резинку, конверт из крафт бумаги, лоток для сброса, емкость с дезраствором. Стерильные: лоток, индивидуальные перья-копья, ватные шарики.

Алгоритм действия:

1. Установить доверительные отношения с пациентом.

2. Объяснить цель и ход процедуры.

3. Вымыть и просушить руки.

4. Надеть перчатки и маску.

5. Обработать кожу 4-го пальца руки спиртом.

6. Проколоть последнюю фалангу 4-го пальца индивидуальным пером-копьем.

7. Поместить перо в лоток для сброса.

8. Снять первую каплю крови сухим ватным шариком.

9. Поместить ватный шарик в емкость с дезраствором.

10. Повернуть палец проколом вниз.

11. Прикоснуться предметным стеклом ко второй капле крови, отступив от узкого края стекла на 1,5-2 см.

12. Приложить ватный шарик к месту прокола.

13. Поставить шлифованное стекло перед каплей крови под углом 450.

14. Продвинуть шлифованное стекло до соприкосновения с каплей крови правой руки.

15. Сделать мазок быстрым движением, когда кровь равномерно распределится между обоими стеклами.

16. Указать регистрационный номер с обратной стороны стекла.

17. Высушить препарат в воздухе в горизонтальном положении.

18. Поместить толстую каплю между двумя стеклами, используя спички и круглую резинку.

19. Оформить направление в паразитологическую лабораторию.

20. Поместить препарат в конверт и отправить немедленно в лабораторию.

10. Стандарт «Типы противочумного костюма»

Первый тип или полный противочумный костюмсостоит из: пижамы или комбинезона, большой косынки (капюшона), противочумного халата, ватно-марлевой маски, очков-консервов, резиновых перчаток, носков (чулок), сапог резиновых, полотенца.

Цель:противочумный костюм первого типа применяется при:

Алгоритм действия:

  1. работе в госпитале, провизорном госпитале и др. с больными легочной или септическими формами чумы.
  2. до установления окончательного диагноза у больных бубонной и кожной формами чумы и до получения отрицательного результата бактериологического исследования;
  3. больных КВЛ (геморрагическими вирусными лихорадками);
  4. работе в изоляторе для контактных с больными легочной формой чумы и больных КВЛ;
  5. проведении текущей и заключительной дезинфекции (дезинсекции и дератизации) в очаге заболеваний легочной формой чумы;
  6. вскрытии трупа погибшего от чумы;
  7. проведении подворных обходов;
  8. заборе материала для лабораторных исследований от больных с подозрением на чуму, КГВЛ.

Примечание: Для вскрытия трупа необходимо дополнительно иметь вторую пару перчаток, клеенчатый фартук, нарукавники.

Названия:

Второй тип противочумного костюма состоит: из пижамы или комбинезона, большой косынки (капюшона), противочумного халата, ватно-марлевой маски, резиновыфх перчаток, носков (чулок), резиновых сапог, полотенца.

Цель:противочумный костюм второго типа применяется при:

Алгоритм действия:

  1. работе в госпитале, провизорном госпитале и др. с больными оспой обезьян;

25.Стандарт «Оказание неотложной помощи при анафилактическом шоке»

Цель:Купирование острых нарушений функций кровообращения и дыхания: блокирование поступления лекарства-аллергена в кровоток: подержание жизненно важных функций организма.

Ресурсы: тонометр, фонендоскоп, стерильные: одноразовые шприцы, ватные шарики, спирт этиловый 70%, резиновый жгут, перчатки, пинцет в дезрастворе, лоток, лекарственные препараты: адреналин 0,1%- 0.5 мл, физиологический раствор 200 мл, преднизолон 30-60мг, 10-15мл. 5% р-ра глюкозы, супрастин 1% 2-4 мл или димедрол 1% 2-5мл. эуфиллин 2,4%-10мл, строфантин 0,05%-0,5мл.

Алгоритм действий:

1. Прекратить введение аллергена, наложить жгут выше места инъекции:

2. Уложить пациента и зафиксировать язык, голову на бок, удалить зубные протезы.

3. Приподнять ножной конец кровати:

4. Обеспечить доступ свежего воздуха, подать увлажненный кислород:

5. При пероральном приеме лекарства-аллергена промыть больному желудок, если позволяет его состояние.

6. Контролируйте пульс, дыхание, артериальное давление.

7. Ввести адреналин 0,1%- 0.5 мл с 5 мл физ. раствора в/в или п/к 0.5-1 мл в месте введения аллергена.

8. Ввести преднизолон 30-60мг, 10-15мл. 5% раствора глюкозы в/в медленно.

9. Ввести супрастин 1% 2-4 мл или димедрол 1% 2-5мл.

10. Ввести эуфиллин 2,4%-10мл в 10 мл физ.раствора в/в при затруднении дыхания.

11. Ввести строфантин 0,05%-0,5мл на 10 мл физ.раствора в/в по показанием.

12. Следить за состоянием пациента: измерять пульс, АД.

24.Стандарт «Алгоритм оказания неотложной помощи при гипертермии»

1. Уложите пациента в постель.

2. Расстегните стесняющую одежду.

3. Обеспечьте доступ свежего воздуха.

4. Измерьте температуру :

А.Если температура тела 37,0-37,5ºС назначьте обильное питание:

В. Если температура тела 37,5-38,0ºС , разденьте и проведите физическое охлаждение: разведите спирт 1:1, протрите и укройте, на лоб приложите холодный компресс, если температура тела 38,0-38,5ºС и выше дайте жаропонижающие препараты: панадол, парацетамол, ибупрофен и т.д.

5. В течение 20-30 минут от начала проведения мероприятия постарайтесь вызвать мочеиспускание ребенка.

6. Измерьте температуру тела через 20-30 минут.

7. Проведите коррекцию проводимых мероприятий с учетом показателей повторной термометрии.

2. проведении текущей и заключительной дезинфекции в очаге бубонной формой чумы, холеры, оспы обезьян;

3. вскрытие трупа погибшей от холеры, оспы обезьяны;

4. заборе материала от больных с подозрением на оспу обезьян.

Третий тип противочумного костюма состоит из: пижамы, противочумного халата, большой косынки, резиновых перчаток, носков, глубоких калош и полотенца.

Цель:противочумный костюм третьего типа применяется при работе в госпитале, провизорном госпитале с больными бубонной или кожной формой чумы, получающими специфическое лечение.

Противочумный костюм четвертого типа состоит из: пижамы, медицинского халата, шапочки или марлевой косынки, носков, тапочек (туфель).

Цель:противочумный костюм четвертого типа применяется при:

Алгоритм действия:

  1. работе в госпитале, провизорном госпитале с больными холерой. При проведении туалета больного, надевают резиновые перчатки, при обработке выделений – маску;
  2. заборе материала для лабораторных исследований от больных с подозрением на холеру (дополнительно надевают резиновые перчатки).
Просмотров 1278 Эта страница нарушает авторские права

Источник: https://allrefrs.ru/4-31222.html

Исследование на малярию

Техника забора крови и приготовления мазков для исследования на малярию.

Малярия — одно из опаснейших паразитарных заболеваний на планете, ежегодно поражающее сотни миллионов человек. Люди должны понимать, как проводятся исследования на малярию, как распознать симптомы и когда обратиться за лечением. Ежегодно из сотен миллионов заразившихся сотни тысяч умирают, несмотря на то, что существует лекарство, заболевание поддается лечению.

Что такое малярия?

Малярия — опасное и очень заразное паразитарное заболевание, легко передающееся через укусы комаров рода анофелис и через кровь, например, при переливании. Недуг сопровождается повторяющимися приступами лихорадки, наиболее широко распространен в странах с влажным и жарким климатом.

После того как паразит попал в тело, он начинает размножаться, поражает клетки, разрушает их, лавинообразно наращивая свое присутствие. Посему решившие посетить жаркие тропические страны должны проявлять повышенную осторожность, и при наименьших подозрениях сдать анализ крови.

Заражению особенно подвержены:

  • люди с низким иммунитетом,
  • дети до 5 лет,
  • беременные женщины.

Виды плазмодий

Всего различают четыре различных вида малярии и четыре типа плазмодий, ее вызывающие:

  1. Plasmodium falciparum, что провоцирует тропическую лихорадку — одну из самих опасных и нуждающихся в срочном лечении разновидностей заболевания.
  2. Plasmodium vivax — провоцирует появление трехдневной малярии.
  3. Plasmodium malariae — является источником четырехдневной лихорадки.
  4. Plasmodium ovale — главная причина малярии овале (недуга вроде трехдневной).

Симптомы малярии

Главными (и самим очевидными) симптомами, проявляющимся при малярии, являются повторяющиеся с равными промежутками времени приступы лихорадки, повышение температуры и озноб. Длятся они несколько часов и сопровождаются такими признаками:

  • повышение температуры до 41 °C;
  • дрожь;
  • проявления кашля;
  • повышенная потливость (обычно сопровождает окончание приступа и снижение температуры).

Кроме того приступы могут сопровождаться такими явлениями как:

  • расстройства пищеварительной системы,
  • боль в разных частях тела, мышцах, голове,
  • повышенная утомляемость,
  • желтуха.

Хотя обычно симптомы при малярии проявляются спустя несколько недель после заражения, некоторые возбудители могут месяцами жить в организме незаметно. Во время острых приступов наблюдается тенденция к изменению состава крови, может возникать анемия, в особенности при тропической лихорадке. Возможно увеличение внутренних органов, например селезенки, но точную оценку может дать лишь врач.

Диагностические исследования малярии

Для точного диагноза необходимо сделать общий анализ крови и мочи.

При обнаружении вышеперечисленных симптомов необходимо срочно провести диагностику малярии.

Единственным основным способом диагностирования заболевания до сих пор остается непосредственное обнаружение плазмодиев в крови, которая берется у больного во время приступов. Самые распространенные способы анализа включают взятие крови на малярию методом толстой капли и мазка.

Обнаружив плазмодии, можно определить, серьезно ли болен человек, каким именно штаммом. Проводятся также общее исследование крови, обследование мочи, биохимические исследования на содержание билирубина или уровень альбумина.

Общий анализ крови

Поскольку паразит влияет непосредственно на кровь, из-за лихорадки в ее составе наблюдаются различные изменения. Таким образом, показано проведение общего обследования крови для выявления малярии. Лейкоцитоз, анемия, тромбоцитопения — вот лишь немногие возможные последствия болезни.

В общий анализ входят:

  • Сравнение уровня гемоглобина, а также эритроцитов — плазмодии влияют напрямую на кровяные тельца, разрушая их во время болезни.
  • Оценка показания уменьшения тромбоцитов — наблюдается у подавляющего большинства больных, является одним их характерных признаков малярии.
  • Проверка лимфоцитов — их уровень тоже может меняться во время болезни.

Другие анализы

Толстая капля на малярию – простой метод обнаружения заболевания.

Можно также выделить ряд других анализов крови, что могут обнаружить малярию:

  • Метод выявления антител к малярии — позволяет с помощью введения в организм плазмодия отслеживать реакцию иммунитета на него. Если итогом будет негативная реакция, это позволит исключить диагноз.
  • Метод выявления белков плазмодия является одним из новейших возможных анализов, позволяющих определять составные молекулы возбудителя. При сравнительной быстроте способ обладает неплохой точностью, а также небольшими финансовыми затратами для пациента.
  • Метод ПЦР, или полимеразная цепная реакция — непосредственно определяет генетический материал малярийного плазмодия. Проводя такой анализ крови можно определить точное число возбудителей, даже если оно небольшое. К сожалению, одним из недостатков является высокая стоимость процедуры.

Анализ толстой капли крови и мазка

Анализ мазка и толстой капли крови являются наиболее дешевыми и простыми методами обнаружения малярии. В то же время они требуют внимательности и значительных трудозатрат, а также исполнения ряда рекомендаций.

При необходимости обследовать более одного пациента необходимо подготовить инструментарий заранее. При тонком мазке кровь берут из безымянного либо среднего пальца на левой руке. При изготовлении мазка палец удерживается ранкой кверху.

Мазок крови — небольшой, его располагают в центре стекла.

Толстая капля отличается от мазка возможностью исследовать больший объем материала. Если обычные мазки крови— тоненькие, то капля, наносимая на стекло этим методом, имеет размер с монету. В итоге, исследуется в десятки раз больший объем крови.

В дальнейшем каплю подсушивают, и после окрашивания краской Романовского, промывания — исследуют.

Лучше, если анализы будет проводить опытный исследователь, ведь неподготовленный может принять за паразитов различные загрязнения или образования: бляшки Биццоцеро, обломки лейкоцитов, различные микроорганизмы, включая грибок или простейших, случайно попавших на образец.

Источник: http://InfoParazit.ru/bakterii-i-infektsii/issledovaniya-na-malyariyu.html

ОкругВрача
Добавить комментарий